Перейти на главную страницу
исследовательским институтом общей и коммунальной гигиены им. А.Н. Сысина АМН СССР при
участии Куйбышевского НИИ гигиены МЗ РСФСР.
Методические рекомендации предназначены для республиканских, краевых, областных,
городских и районных СЭС и научно-исследовательских институтов.
рекомендованы к утверждению.
возбудителей вирусной природы и снижению заболеваемости важная роль принадлежит контролю и
оценке качества объектов окружающей среды в отношении вирусного загрязнения.
Контроль качества объектов окружающей среды должен основываться на эффективных
современных методах индикации максимально широкого спектра возбудителей вирусной природы, в
передаче которых человеку ведущая роль отводится объектам окружающей среды. Однако
существующие методы индикации вирусов в объектах окружающей среды трудоемки, дороги,
длительны по срокам выполнения и позволяют получать только ретроспективные данные, что
снижает их эпидемическую значимость.
загрязнением объектов окружающей среды должен осуществляться по косвенным показателям -
индикаторам вирусного загрязнения; по эпидпоказаниям - проводится непосредственное выделение
возбудителей вирусной этиологии из объектов окружающей среды с регистрацией их уровней.
загрязнения объектов окружающей среды и включают: обоснование выбора косвенных показателей
вирусного загрязнения, методы их индикации и лимитирующие уровни, комплексную схему
санитарно-вирусологического исследования, поэтапные схемы выделения вирусов с учетом
особенностей каждого объекта окружающей среды.
Настоящие Методические рекомендации предназначены для использования в республиканских,
краевых, областных, городских и районных СЭС, осуществляющих контроль за санитарно-
гигиеническим состоянием объектов окружающей среды, и в научно-исследовательских учреждениях
гигиенического профиля.
вредности к их предельно допустимой концентрации
6П;
весы равноплечие, ручные ВР-100, ГОСТ 395-54;
температуры 50 °С с ценой деления 0,2 °С;
бактериальных препаратов им. Л.А. Тарасевича, НИИ общей и коммунальной гигиены им. А.Н.
Сысина АМН СССР).
3. Обоснование косвенных показателей вирусного
загрязнения объектов окружающей среды
Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
В действующих нормативах и законодательных документах оценка эпидемической безопасности
объектов окружающей среды осуществляется с использованием косвенных бактериальных
показателей. Однако существующие показатели не всегда адекватны в отношении вирусного
загрязнения.
использовать колифаг. Колифаг - вирус бактериальной клетки, способный лизировать кишечную
палочку (E. coli) и давать негативные колонии через 18 - 24 часа при 37 °С на 1,5% МПА. Колифаги в
полной мере отвечают требованиям, предъявляемым к индикаторным микроорганизмам: имеют
единый с вирусами источник поступления в объекты окружающей среды, по размерам, строению,
свойствам приближается к человеческим вирусам, обнаруживается во всех объектах, где могут
встретиться энтеровирусы, его концентрации значительно превышают концентрации вирусов, он
безвреден для человека, более устойчив, чем бактерии группы кишечной палочки, к естественным
факторам окружающей среды и обезвреживающим средствам; по срокам выживаемости в объектах
окружающей среды приближаются к вирусам. Методы выделения колифагов не требуют сложного
оборудования, чувствительны, надежды, эффективны, просты. Количественный учет, проводимый
либо по бляшкообразующим единицам, либо по НВЧ сопоставим с современными методами
количественного учета энтеровирусов.
Для воздуха закрытых помещений и, в первую очередь, для больничных палат адекватным
показателем санитарно-гигиенического состояния является индекс гемолитической кокковой
микрофлоры (ИГКМ). ИГКМ - количество микробных клеток гемолитической кокковой микрофлоры
в 1 куб. м воздуха, приходящиеся на 1000 микробных клеток общей микрофлоры. Увеличение
количества гемолитических стафилококков и стрептококков на поверхности слизистой верхних
дыхательных путей наблюдается у больных и ослабленных людей. При этом происходит массивное
их выделение в воздух. Гемолитическая микрофлора (гемолитические стрептококки и стафилококки)
отвечают требованиям, предъявляемым к индикаторным микроорганизмам, и широко используются
для оценки санитарного состояния воздушной среды помещений. В то же время ИГКМ отражает не
только санитарное, но и эпидемическое состояние воздушной среды закрытых помещений в
отношении различных аэрогенных инфекций.
4. Комплексная схема контроля и сценки качества объектов
окружающей среды по вирусологическим показателям
На современном уровне развития гигиенической науки критериями эпидемической
безопасности объектов окружающей среды в отношении вирусного загрязнения является отсутствие в
них опасных для человека возбудителей вирусной и бактериальной природы в определенных
объемах. Исходя из этого положения, в основу комплексной схемы санитарно-вирусологического
контроля и оценки качества объектов окружающей среды положены следующие критерии:
- отсутствие вирусов в определенных объемах исследуемых объектов с учетом чувствительности
предлагаемых методов;
объектов в отношении вирусного загрязнения.
лабораториями, обследованию подлежат пробы, исследуемые на коли-индекс.
косвенных показателей, перечень методов выделения и нормативы оценочных показателей,
систематизированные в комплексную схему контроля и оценки качества объектов окружающей среды
в отношении вирусного загрязнения, представлены в таблице N 4.1.
------------T-----------¬
выделения ¦ Оценочные ¦
¦ ¦ показатели ¦
--T---------+ и их ¦
вирусов ¦ колифагов ¦ нормативные ¦
¦ ¦ ¦ уровни ¦
--+---------+-----------+
4 ¦ 5 ¦ 6 ¦
--+---------+-----------+
¦ посев ¦ Индекс ¦
; ¦ 1,0 мл ¦ колифага ¦
3 ¦ ¦ для межэпи- ¦
на ¦ ¦ демического ¦
¦ естественных ¦ ¦ периода ¦
¦ сорбентах ¦ ¦ <= 1000 ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ -"- ¦ Индекс ¦
¦ ¦ ¦ колифага ¦
¦ ¦ ¦ <= 1000 ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
системах ¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ -"- ¦ Индекс ¦
¦ ¦ ¦ колифага ¦
¦ ¦ ¦ <= 100 ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ искусственных ¦ мл или ¦ ¦
естествен- ¦ метод ¦ ¦
сорбентах ¦ подращи- ¦ ¦
¦ ¦ вания ¦ Индекс ¦
¦ ¦ ¦ колифага ¦
¦ ¦ ¦ <= 100 ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ Индекс ¦
¦ ¦ ¦ колифага ¦
¦ ¦ ¦ <= 1000 ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ -"- ¦ Индекс ¦
¦ ¦ ¦ колифага ¦
¦ ¦ ¦ <= 100 ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
с ¦ Десорбция ¦ Индекс ¦
¦ последующим ¦ и прямой ¦ колифага ¦
¦ осаждением ¦ посев ¦ <= 10 ¦
¦ 10,0 мл ¦ ¦
или ¦ ¦ ¦
¦ фильтрация ¦ ¦ ¦
фильтр ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦
¦ ФП ¦ ¦ ¦
¦ ¦ ¦ ¦
ПОВ-1 ¦ Отбор ¦ Индекс ¦
1, ¦ проб ¦ гемолитиче- ¦
¦ концентриро- ¦ аппаратом ¦ ской ¦
методом ¦ Кротова, ¦ кокковой ¦
¦ двухфазных ¦ на МПА ¦ микрофлоры ¦
¦ систем ¦ вяной МПА ¦ ¦
--+---------+------------
питьевого водоснабжения. Гигиенические, технические требования и правила выбора".
десятков БОЕ/л, используют метод обогащения <*> или метод осаждения солями магния <**>.
условий для размножения колифагов.
суспензию
ед.) в
количествах соответственно 1 мл, 0,5 мл, 0,5 мл, 0,2 мл и
0,2 мл и
концентрированный МПБ с десятикратным содержанием солей и
пептона в
течение
16 - 18 часов. Параллельно 10 мл пробы освобождают от
пробу
интенсивно встряхивают и после осаждения хлороформа в течение 15 - 20
минут
надосадочную жидкость исследуют методом агаровых слоев. С этой
целью на 4
сверху
наслаивают 2 - 3 мл расплавленного и остуженного до 45 °С 1,5-
процентного
агара, содержащего 0,2 мл 4-часовой бульонной культуры E. coli
(штаммы ATCC
застывания
следующий день
делают
пересчет на 1 л исследуемой воды, т.е. вычисляют индекс
колифага. При
отсутствии колоний из каждого объема, поставленного на обогащение,
отливают
в пробирки по 5 мл пробы, освобождают хлороформом от бактериальной
флоры
вышеизложенным способом и исследуют на наличие колифага методом
агаровых
слоев, высевая по 1 мл из каждого исследуемого объема
параллельно на 4
чашки, и сверху заливают 2 - 3 мл расплавленного и остуженного до
45 °С
0,9-процентного агара, содержащего 0,2 мл 4-часовой бульонной
культуры E.
coli. Метод агаровых слоев можно заменить капельной методикой.
При использовании капельной методики предварительно залитые 1,5-процентным агаром
чашки Петри делят на 4 сектора. На чашку наносят 2 - 3 капли 4-часовой бульонной культуры E. coli
(один из вышеперечисленных штаммов) и растирают шпателем по плоскости агаровой пластины для
получения равномерного сплошного газона бактериальной культуры. Через 5 - 10 минут на
подсушенную поверхность агара секторально наносят по 1 капле исследуемой проб из пробирок. На
одной чашке выделяют колифаг из одного исследуемого объема. После того как жидкость впитается в
агар, чашки переворачивают вверх дном и инкубируют при 37 °С в течение 16 - 18 часов.
Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
Учет результатов при использовании обоих методов проводят аналогичным образом,
качественно оценивая появление на 4 чашках или 4 секторах негативных колоний или зон лизиса.
Проба считается положительной при обнаружении колифага хотя бы на одной из 4 чашек или на
одном из 4 секторов. Содержание колифага в пересчете на 1 л исследуемой воды получают, пользуясь
таблицей и ориентируясь на первый анализируемый объем, из которого выделен колифаг (таблица
5.1.1).
Таблица 5.1.1
оборудования целесообразно пользоваться всеми объектами только при первичном анализе, чтобы
при последующих исследованиях ориентироваться на три объема для получения обязательно одного
отрицательного ответа.
проба в 50 и 100 мл, следовательно концентрация колифага составляет 20 БОЕ/л; при исследовании
объемов в 100, 200, 500 мл положительными на колифаг были пробы в 200 и 500 мл, концентрация
колифага составляет 5 БОЕ/л.
дехлорируют
мг на 1
Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
в нее,
перемешивая 10 мл 1М раствора сульфата магния (MgSO х 7H O) и по
каплям
4 2
3,5 мл 1М раствора фосфорнокислого однозамещенного калия (KH PO ).
Затем
2 4
помутнения
осаждения
отстаивают
раствора HCl
после чего
МПБ и
распределяют по 4 мл в стерильные пробирки (8 - 10 пробирок). В
каждую
пробирку добавляют по 1 мл 4-часовой бульонной культуры E. coli
и 4 мл
расплавленного и остуженного до 45 °С 1,5% МПА. Смесью заливают чашки
с 1,5
агаром (МПА) и инкубируют их в течение 16 - 18 часов при 37 °С.
Затем
проводят учет выросших колоний колифага, суммируют их, полученное
число
будет соответствовать индексу колифага.
5.2. Исследование загрязненных вод поверхностных
водоемов на наличие колифага
Анализ вода поверхностных пресных и морских водоемов, индекс колифагов в которых
превышает 1000, проводится методом агаровых слоев. Исследуемую воду объемом 10 мл
чашки, сверху заливая 1,5% агаром. После инкубирования учитывают выросшие колонии колифага и
делают пересчет на 1 литр исследуемой воды.
5.3. Исследование сточных вод на наличие колифага
Анализ сточных вод на наличие колифага проводят методом агаровых слоев. Исследуемую
пробу объемом 10 мл освобождают от сопутствующей бактериальной флоры (см. пункт 5.1.1), затем 1
мл исходной пробы и 1 мл из десятикратных разведений исследуют методом агаровых слоев (см.
пункт 5.1.1). После инкубирования чашек учитывают выросшие колонии колифага и делают
перерасчет на 1 л исследуемой пробы.
5.4. Исследование почвы на наличие колифага
Для анализа почвы предварительно готовят почвенную суспензию. С этой целью к 10 г почвы
добавляют 20 мл стандартной среды 199, содержащей 5% инактивированной нагреванием бычьей
сыворотки (pH 9,0). Затем проводят обработку ультразвуком на отечественном диспергаторе УЗДН-1
соответственно: для серозема 30 минут, чернозема - 10 минут, дерново-подзолистой почвы - 5 минут.
Этот этап можно заменить механической обработкой, интенсивно встряхивая почвенную суспензию
10 - 15 минут вручную или на аппарате для встряхивания жидкостей. Обработанную суспензию
центрифугируют при 4000 об./мин. в течение 15 минут, в надосадочной жидкости устанавливают pH
7,0, освобождают ее от сопутствующей бактериальной флоры (см. пункт 5.1.1) и делают посев 1,0 мл
исходной пробы и 1,0 мл десятикратного разведения методом агаровых слоев. После инкубирования
учитывают выросшие колонии колифага и делают перерасчет на 1 г исследуемой почвы.
концентрирования вирусов и их количественного учета) представлено на схемах, включающих
общую схему санитарно-вирусологического исследования объектов окружающей среды и
развернутые схемы исследования каждого объекта в отдельности.
объектов окружающей среды при проведении санитарно-вирусологического контроля воды
различной степени загрязнения, воздуха и почвы. Она позволяет планировать одномоментное
проведение анализов проб из различных объектов окружающей среды.
г 500 л
Приготовление Отбор проб
почвенной приборами
суспензии, ПОВ-1 или
десорбция ПАБ-1
вирусов ¦
---¬ -------
\/ \/ \/
Полиэтиленгликоль
бактериальной флоры одним из
антибиотиками
культурах ткани,
на исследуемый
нейтрализации
вирусологическому контролю объектов окружающей среды", М., 1982.
степени облегчают проведение анализов по отдельным объектам окружающей среды, так как в них
представлен полный ход исследования от отбора и концентрирования вирусов до их
количественного учета в исследуемом образце и идентификации. Схемы уточняют область
использования каждого метода, объем исследуемых проб, как для воды различной степени
загрязнения, так воздуха закрытых помещений и почвы населенных мест.
-----¬
Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
фосфатного ¦
контакта ¦
температуре ¦
положении ¦
при ¦
¦ колонки или 16 - 18 час. при ¦ ¦ 4 -
6° ¦
¦ 4 - 6° ¦
¦ ¦
------
коррекция pH элюата до 7,0 - 7,2
-----¬
¦ I - этиловый эфир ¦ ¦ II - фреон ¦ ¦ III -
хлороформ ¦
¦ (50% к объему ¦ ¦ (три части фреона 113 с уд. ¦ ¦ (10% к
объему ¦
¦ концентрата), ¦
¦ антибиотики ¦
------
1000 ЕД - Na соль бензилпенициллина, 1 мг хлоркальциевый
комплекс
стрептомицина, 1000 ЕД нистатина
Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
IV этап - вирусологическое исследование, количественный учет
V этап - идентификация выделенных вирусов в реакции нейтрализации
Рис. 6.2. Схема исследования воды поверхностных водоемов
с использованием метода концентрирования вирусов
на ионообменных смолах (АВ-17-8, АВ-17-ИК)
Объем исследуемой пробы
Природные воды - 3 л Сточные воды - 1 л
I этап - концентрирование вирусов методом осаждения
---------------------------------------------------------------------
-----¬
¦ нагревание пробы воды до температуры 18 - 20°, внесение в
нее ¦
¦ сернокислого алюминия из расчета 2 мл 10-процентного, раствора Al
(SO ) ¦
¦ 2
4 3 ¦
¦ на 1 л исследуемой пробы; коррекция pH до значений 5,4 - 5,8,
осаждение ¦
осадка при ¦
удаляют ¦
------
II этап - элюция вирусных частиц
-----¬
Не является официальной версией, бесплатно предоставляется членам Ассоциации лесопользователей Приладожья, Поморья и Прионежья – www.alppp.ru. Постоянно действующий третейский суд.
пробы), ¦
жидкость ¦
л ¦
¦ исследуемой пробы, pH
7,4) ¦
L--------------------------------------------------------------------
------
III этап - антибактериальная обработка (см. рис. 6.2)
-----¬
¦ в 10 г почвы вносят 20 мл ¦ ¦ в 10 г почвы вносят 20 мл среды
199 ¦
¦ фосфатного буфера или среды 199 ¦ ¦ с 5% инактивированной
бычьей ¦
на ¦
УЗДН-1 ¦
10 ¦
¦ мин. и центрифугируют при 3000 ¦ ¦ минут, дерново-подзолистую -
5 ¦
¦ об./мин. в течение 20 мин. ¦ ¦ минут), суспензию
центрифугируют при ¦
мин. ¦
------
---------------¬
загрязнения. Оценка санитарно-вирусологического состояния проводится по индикаторным
микроорганизмам - колифагам - для водных объектов и почвы и по ИГКМ - для воздуха больничных
помещений. Превышение указанных в методических рекомендациях уровней индикаторных
микроорганизмов - свидетельствует о возможном появлении ситуаций опасных в отношении
возникновения вирусных кишечных или респираторных инфекций. При превышении допустимых
уровней косвенных показателей необходимо проведение исследований по прямому выделению
вирусов из объектов окружающей среды и сопоставление полученных результатов с комплексом
данных, включающих сведения о санитарной и эпидемиологической обстановке на территории
обследования.
Методические рекомендации предназначены для республиканских, краевых, областных
25 12 2014
1 стр.
Биологическая индикация позволяет оценивать степень загрязнения окружающей среды по существующим биологическим показателям
23 09 2014
1 стр.
Разработан отделом контроля атмосферы Всесоюзного научно-исследовательского института охраны природы и заповедного дела Министерства природопользования и охраны окружающей среды СС
06 10 2014
11 стр.
Методические рекомендации содержат информацию об условиях формирования и характеристике газовоздушных выбросов в атмосферный воздух на предприятиях по производству
17 12 2014
1 стр.
Загрязнение окружающей среды — нежелательное изменение её свойств в результате антропогенного поступления различных веществ и соединений. Источники загрязнения среды различны
07 10 2014
1 стр.
Методические указания разработаны Киевским научно-исследовательским институтом гигиены
26 09 2014
1 стр.
Целью разработки раздела "Охрана окружающей среды" в проекте является обеспечение приоритетности вопросов охраны окружающей среды, рационального природопользования
28 09 2014
12 стр.
10 10 2014
1 стр.